Please use this identifier to cite or link to this item: http://repositorio.uptc.edu.co/handle/001/2859
Full metadata record
DC FieldValueLanguage
dc.contributor.authorMesa Quijano, Paula Elisabeth-
dc.contributor.authorGarcía Domínguez, Celsa-
dc.contributor.authorCotes Prado, Alba Marina-
dc.date.accessioned2019-10-03T15:00:46Z-
dc.date.available2019-10-03T15:00:46Z-
dc.date.issued2017-07-01-
dc.identifier.citationMesa Quijano, P. E., García Domínguez, C. & Cotes Prado, A. M. (2017). En búsqueda de una alternativa de manejo del camanduleo de la papa ocasionada por Spongospora subterranea. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 11(2), 378-386. DOI: http://dx.doi.org/10.17584/rcch.2017v11i2.6150. http://repositorio.uptc.edu.co/handle/001/2859spa
dc.identifier.issn2422-3719-
dc.identifier.urihttp://repositorio.uptc.edu.co/handle/001/2859-
dc.description1 recurso en línea (páginas 378-386) : ilustraciones color.spa
dc.description.abstractEntre las principales problemáticas que se presentan en la producción de papa se encuentra Spongospora subterranea (Wallr.) Lagerheim f. sp. subterránea, agente causal de la sarna polvosa y camanduleo, enfermedades que afectan los tubérculos, las raíces, que no cuentan con prácticas de manejo efectivas. Con el fin de generar una alternativa de manejo se evaluó el efecto en la reducción del camanduleo de microorganismos potencialmente biocontroladores de los géneros Trichoderma spp., Pseudomonas sp., Bacillus sp. y Streptomyces spp. Así mismo, se evaluó el biocarbón, la quitina y el quitosán, aditivos orgánicos que han demostrado actividad de control en otros patosistemas. Inicialmente, se estableció un ensayo para obtener el desarrollo de agallas en dos ambientes diferentes (Mosquera y Subachoque, Cundinamarca) y dos concentraciones de inóculo del protozoo. La evaluación se realizó 8 semanas después de la siembra (SDS), midiendo la severidad expresada como número de agallas por planta. Dado el consistente desarrollo de la enfermedad, se decidió establecer los ensayos en el Municipio de Subachoque, usando suelo naturalmente infestado con 1×103 esporosoros/g de suelo. Al aplicar los biocontroladores, se observó disminución (P>0,05) en el desarrollo de agallas con la mayoría de los microorganismos, siendo Streptomyces misionensis Ac006 el que más redujo la enfermedad en un 51,41%. Por otra parte, entre los aditivos evaluados, fue el quitosán al 0,5% con el que se obtuvo una mayor reducción (P≤0,05) en el número de agallas 62,58%. Estos resultados permiten sugerir el uso de estos tratamientos para el manejo del camanduleo de la papa.spa
dc.format.mimetypeapplication/pdfspa
dc.language.isospaspa
dc.publisherUniversidad Pedagógica y Tecnológica de Colombiaspa
dc.relation.ispartofseriesRevista Colombiana de Ciencias Hortícolas;Volumen 11, número 2 (Julio-Diciembre 2017)-
dc.rightsCopyright (c) 2017 Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombiaspa
dc.rights.urihttps://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/spa
dc.sourcehttps://revistas.uptc.edu.co/index.php/ciencias_horticolas/article/view/6150/pdfspa
dc.subject.otherSpongospora subterranea-
dc.titleEn búsqueda de una alternativa de manejo del camanduleo de la papa ocasionada por Spongospora subterraneaspa
dc.title.alternativeSearching for an alternative to manage powdery scab, caused by Spongospora subterranea, in potatospa
dc.typeArtículo de revistaspa
dcterms.bibliographicCitationAnand, S. y J. Reddy. 2009. Biocontrol potential of Trichoderma sp. against plant pathogen. Int. J. Agric. Sci. 1(2), 30-39. Doi: 10.9735/0975-3710.1.2.30-39spa
dcterms.bibliographicCitationAndres, Y., L. Giraud, C. Gerente y L. Cloirec. 2010. Antibacterial effects of chitosan powder: mechanisms of action. Environ. Techn. 28(12), 1356-1363. Doi: 10.1080/09593332808618893spa
dcterms.bibliographicCitationBalendres, M., R. Tegg y C. Wilson. 2016. Key events in pathogenesis of Spongospora diseases in potato: a review. Australas. Plant Pathol. 45(3), 229-240. Doi: 10.1007/ s13313-016-0398-3spa
dcterms.bibliographicCitationBastidas, L. 2010. Determinación de la capacidad biocontroladora de Pseudomonas spp. contra Spongospora subterranea f. sp. subterranea en el cultivo de papa. Tesis de maestría. Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá, Colombia.spa
dcterms.bibliographicCitationBeauséjour, J., N. Clermont y C. Beaulieu. 2003. Effect of Streptomyces melanosporofaciens strain EF-76 and of chitosan on common scab of potato. Plant Soil 256(2), 463-468. Doi: 10.1023/A:1026177714855spa
dcterms.bibliographicCitationBeltrán, C. y E. Garcés. 2011. Selección de aislamientos de Trichoderma spp. con potencial biocontrolador de Rhizoctonia solani Kühn en papa bajo condiciones de casa de malla. Acta Biol. Colomb. 10(1), 82-83.spa
dcterms.bibliographicCitationBrierley, J., L. Sullivan, S. Wale, A. Hilton, D. Kiezebrink y A. Lees. 2013. Relationship between Spongospora subterranea f. sp.subterranea soil inoculum level, host resistance and powdery scab on potato tubers in the field. Plant Pathol. 62(2), 413-420. Doi: 10.1111/j.1365-3059.2012.02649.xspa
dcterms.bibliographicCitationCaviedes, D. 2010. Aislamiento y selección de Pseudomonas sp. y Bacillus sp., promotoras del crecimiento vegetal en cultivo de uchuva (Physalis peruviana L.) con actividad antagónica frente a Fusarium oxysporum. Trabajo de grado en Microbiología industrial. Pontificia Universidad Javeriana, Bogotá, Colombia.spa
dcterms.bibliographicCitationChirkov, S., A. Il’ina, N. Surgucheva, E. Letunova, Y. Varitsev, N. Tatarinova y V. Varlamov. 2001. Effect of chitosan on systemic viral infection and some defense responses in potato plants. Russ. J. Plant Physiol. 48(6), 774-779. Doi: 10.1023/A:1012508625017spa
dcterms.bibliographicCitationChung, W., R. Wu, C. Hsu, H. Huang y J. Huang. 2011. Application of antagonistic rhizobacteria for control of Fusarium seedling blight and basal rot of lily. Aust. Plant Pathol. 40(3), 269-276. Doi: 10.1007/ s13313-011-0040-3spa
dcterms.bibliographicCitationCohen, E. 2001. Chitin synthesis and inhibition: a revisit. Pest Manag. Sci. 57(10), 946-950. Doi: 10.1002/ps.363spa
dcterms.bibliographicCitationCorrales, C., C. Zuluaga, J. Cotes y E. González. 2012. Determinación de las condiciones óptimas para la liberación de zoosporas de Spongospora subterranea en bioensayos. Trop. Plant Pathol. 37(4), 239-245. Doi: 10.1590/S1982-56762012000400002spa
dcterms.bibliographicCitationCotes, A., A. Cárdenas y H. Pinzon. 2001. Effect of seed priming in the presence of Trichoderma koningii on seed and seedling disease induced in tomato by Rhizoctonia solani and Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici. IOBCWPRS Bull. 24, 259-263.spa
dcterms.bibliographicCitationDíaz, A., P. Smith, P. Mesa, J. Zapata, D. Caviedes y A. Cotes. 2013. Control of Fusarium wilt in cape gooseberry by Trichoderma koningiopsis and PGPR. IOBC-WPRS Bull. 86, 89-94.spa
dcterms.bibliographicCitationEL Hadrami, A., L. Adam, I. Hadrami y F. Daayf. 2010. Chitosan in plant protection. Mar. Drugs 8(4), 968. Doi: 10.3390/md8040968spa
dcterms.bibliographicCitationFalloon, R., 2008. Control of powdery scab of potato: towards integrated disease management. Am. J. Potato Res. 85(4), 253-260. Doi: 10.1007/s12230-008-9022-6spa
dcterms.bibliographicCitationFalloon, R., U. Merz, R. Butler, D. Curtin, R. Lister y S. Thomas. 2016. Root infection of potato by Spongospora subterranea: knowledge review and evidence for decreased plant productivity. Plant Pathol. 65(3), 422- 434. Doi: 10.1111/ppa.12419spa
dcterms.bibliographicCitationGaneshan, G. y A. Kumar. 2005. Pseudomonas fluorescens, a potential bacterial antagonist to control plant diseases. J. Plant Interact. 1(3), 123-134. Doi: 10.1080/17429140600907043spa
dcterms.bibliographicCitationGilchrist, E., J. Soler, U. Merz y S. Reynaldi. 2011. Powdery scab effect on the potato Solanum tuberosum ssp. andigena growth and yield. Trop. Plant Pathol. 36(6), 350- 355. Doi: 10.1590/S1982-56762011000600002spa
dcterms.bibliographicCitationGoy, R., D. de Britto y O. Assis. 2009. A review of the antimicrobial activity of chitosan. Polímeros 19(3), 241- 247. Doi: 10.1590/S0104-14282009000300013spa
dcterms.bibliographicCitationHoyos, L., S. Jaramillo y S. Orduz. 2008. Evaluation of Trichoderma asperellum as bioregulator of Spongospora subterranea f. sp. subterranea. Rev. Fac. Nac. Agr. Medellín 61(2), 4496-4502spa
dcterms.bibliographicCitationJin, R., J. Suh, R. Park, Y. Kim, H. Krishnan y K. Kim. 2005. Effect of chitin compost and broth on biological control of Meloidogyne incognita on tomato (Lycopersicon esculentum Mill.). Nematology 7(1), 125-132. Doi: 10.1163/1568541054192171spa
dcterms.bibliographicCitationMelia, S. e I. Aryantha. 2010. The effects of Chitosan on antifungal activity of Trichoderma harzianum Rifai against Fusarium oxysporum. pp. 6-8. En: The 2nd International Biotechnology & Biodiversity Conference. Johor Bahru, Johor, Malaysia.spa
dcterms.bibliographicCitationMesa, P., C. Moreno y A. Cotes. 2014. Efecto promotor de crecimiento vegetal y biocontrolador de Trichoderma koningiopsis sobre Rhizoctonia solani en el cultivo de arroz. Actual. Biológicas 36, 242.spa
dcterms.bibliographicCitationMoreno, C., F. Castillo, A. González, D. Bernal, Y. Jaimes, M. Chaparro, C. González, F. Rodriguez, S. Restrepo y A. Cotes. 2009. Biological and molecular characterization of the response of tomato plants treated with Trichoderma koningiopsis. Physiol. Mol. Plant Pathol. 74(2), 111-120. Doi: 10.1016/j.pmpp.2009.10.001spa
dcterms.bibliographicCitationNakayama, T., M. Horita y T. Shimanuki. 2007. Spongospora subterranea soil contamination and its relationship to severity of powdery scab on potatoes. J. Gen. Plant Pathol. 73(4), 229-234. Doi: 10.1007/s10327-007-0008-xspa
dcterms.bibliographicCitationNandakumar, R., S. Babu, R. Viswanathan, T. Raguchander y R. Samiyappan. 2001. Induction of systemic resistance in rice against sheath blight disease by Pseudomonas fluorescens. Soil Biol. Biochem. 33(4), 603-612. Doi: 10.1016/S0038-0717(00)00202-9spa
dcterms.bibliographicCitationNeuhauser, C. y J. Fargione. 2004. A mutualism-parasitism continuum model and its application to plant-mycorrhizae interactions. Ecol. Model. 177(3), 337-352. Doi: 10.1016/j.ecolmodel.2004.02.010spa
dcterms.bibliographicCitationNielsen, S. y J. Larsen. 2004. Two Trichoderma harzianum-based bio-control agents reduce tomato root infection with Spongospora subterranea (Wallr.) Lagerh., f. sp.subterranea, the vector of Potato mop-top virus. J. Plant Dis. Prot. 111(2), 145-150. Doi: 10.1007/BF03356140spa
dcterms.bibliographicCitationNunes da Silva, M., A. Cardoso, D. Ferreira, M. Brito, M. Pintado y M. Vasconcelos. 2014. Chitosan as a biocontrol agent against the pinewood nematode (Bursaphelenchus xylophilus). For. Pathol. 44(5), 420-423. Doi: 10.1111/efp.12136spa
dcterms.bibliographicCitationPoomthongdee, N., K. Duangmal y W. Pathom-aree. 2015. Acidophilic actinomycetes from rhizosphere soil: diversity and properties beneficial to plants. J. Antibiot. 68(2), 106-114. Doi: 10.1038/ja.2014.117spa
dcterms.bibliographicCitationPuerta, S., L. Hoyos y E. González. 2008. Factors affecting the zoospore release of Spongospora subterranean (Wallroth) Lagerheim f. sp. subterranea Tomlinson. Rev. Fac. Nac. Agr. Medellín 61(2), 4503-4510.spa
dcterms.bibliographicCitationQu, X. y B. Christ. 2006. Single cystosorus isolate production and restriction fragment length polymorphism characterization of the obligate biotroph Spongospora subterranea f. sp. subterranea. Phytopathology 96(10), 1157-1163. Doi: 10.1094/PHYTO-96-1157spa
dcterms.bibliographicCitationQu, X., L. Wanner y B. Christ. 2011. Multiplex real-time PCR (TaqMan) assay for the simultaneous detection and discrimination of potato powdery and common scab diseases and pathogens. J. Appl. Microbiol. 110(3), 769-777. Doi: 10.1111/j.1365-2672.2010.04930.xspa
dcterms.bibliographicCitationRestrepo, F., S. Jaramillo y M. Cotes. 2009. Effect of two microorganisms, mycorhize and pine wood shavings on the control of powdery scab (Spongospora subterranea) in potato. Rev. Fac. Nac. Agr. Medellín 62(2), 5047-5054.spa
dcterms.bibliographicCitationRivero, D. 2008. Identificación y control in vitro con quitosana y Trichoderma spp. de hongos que causan el manchado del grano en arroz (Oryza sativa L.). Rev. Protec. Veg. 23, 67-67.spa
dcterms.bibliographicCitationRuíz, C., L. Izquierdo, C. Moreno, M. Gómez y L. Villamizar. 2013. Development, stability and biocontrol activity of a formulation based on Pseudomonas fluorescens Ps06. Int. Organ. Biol. Integated Control-WPRS Bull. 86, 25-30.spa
dcterms.bibliographicCitationSastoque, E., A. Cotes, R. Rodríguez y A. Pedroza. 2010. Effect of nutrients and fermentation conditions on the production of biosurfactants using rhizobacteria isolated from fique plants. Univ. Sci. 15(3), 251-264. Doi: 10.11144/javeriana.SC15-3.eonaspa
dcterms.bibliographicCitationShah, F., R. Falloon, R. Butler y R. Lister. 2011. Low amounts of Spongospora subterranea sporosorus inoculum cause severe powdery scab, root galling and reduced water use in potato (Solanum tuberosum). Aust. Plant Pathol. 41(2), 219-228. Doi: 10.1007/s13313-011-0110-6spa
dcterms.bibliographicCitationSiddiqui, I., S. Shaukat, I. Sheikh y A. Khan. 2006. Role of cyanide production by Pseudomonas fluorescens CHA0 in the suppression of root-knot nematode, Meloidogyne javanica in tomato. World J. Microbiol. Biotechnol. 22(6), 641-650. Doi: 10.1007/s11274-005-9084-2spa
dcterms.bibliographicCitationSmith, A., C. Beltrán, M. Kusunoki, A. Cotes. K. Motohashi, T. Kondo y M. Deguchi, 2012. Diversity of soil-dwelling Trichoderma in Colombia and their potential as biocontrol agents against the phytopathogenic fungus Sclerotinia sclerotiorum (Lib.) de Bary. J. Gen. Plant Pathol. 79(1), 74-85. Doi: 10.1007/s10327-012-0419-1spa
dcterms.bibliographicCitationSoler, J., E. Gilchrist y J. Peréz. 2012a. Evaluación de microorganismos con potencial de promoción de crecimiento vegetal y biocontrol de Spongospora subterranea. Rev. Colomb. Biotecnol. 14(1), 157-170. Doi: 10.15446/rev. colomb.biotespa
dcterms.bibliographicCitationSoler, J., L.F. Uribe-L. y J. Peréz-N. 2012b. Differential distrubution of candidadate biocontrol bacteria against Spongospora subterranea in potato plants (Solanum tuberosum cv. Diacol Capiro). Rev. Fac. Nac. Agr. Medellín 65(1), 6337-6348.spa
dcterms.bibliographicCitationSun, S., J. Wang, L. Zhu, D. Liao, M. Gu, L. Ren, Y. Kapulnik y G. Xu. 2012. An active factor from tomato root exudates plays an important role in efficient establishment of mycorrhizal symbiosis. PLoS ONE 7(8), e43385. Doi: 10.1371/journal.pone.0043385spa
dcterms.bibliographicCitationSzczech, M. y M. Shoda. 2004. Biocontrol of Rhizoctonia damping-off of tomato by Bacillus subtilis combined with Burkholderia cepacia. J. Phytopathol. 152(10), 549-556. Doi: 10.1111/j.1439-0434.2004.00894.xspa
dcterms.bibliographicCitationVan De Graaf, P., S. Wale y A. Lees. 2007. Factors affecting the incidence and severity of Spongospora subterranea infection and galling in potato roots. Plant Pathol. 56(6), 1005-1013. Doi: 10.1111/j.1365-3059.2007.01686.xspa
dcterms.bibliographicCitationVasyukova, N., S. Zinov’eva, L. Il’inskaya, E. Perekhod, G. Chalenko, N. Gerasimova, A.I. Varlamov y O. Ozeretskovskaya. 2001. Modulation of plant resistance to diseases by water-soluble chitosan. Appl. Biochem. Microbiol. 37(1), 103-109. Doi: 10.1023/A:1002865029994spa
dcterms.bibliographicCitationZeng, D. e Y. Shi. 2009. Preparation and application of a novel environmentally friendly organic seed coating for rice. J. Sci. Food Agric. 89(13), 2181-2185. Doi: 10.1002/jsfa.3700spa
dcterms.bibliographicCitationZhang, N., D. Wang, Y. Liu, S. Li, Q. Shen y R. Zhang. 2014. Effects of different plant root exudates and their organic acid components on chemotaxis, biofilm formation and colonization by beneficial rhizosphere- associated bacterial strains. Plant Soil 374(2), 689- 700. Doi: 10.1007/s11104-013-1915-6spa
dc.description.notesBibliografía: páginas 384-386.spa
dc.rights.accessrightsinfo:eu-repo/semantics/openAccessspa
dc.type.dcmi-type-vocabularyTextspa
dc.type.driverinfo:eu-repo/semantics/articlespa
dc.type.versioninfo:eu-repo/semantics/publishedVersionspa
dc.description.abstractenglishOne of the main problems in potato production is powdery scab, caused by the protozoan Spongospora subterranea. Currently, there are no effective control strategies for this pathogen, which causes root damage and, therefore, reduces tuber quality. In order to develop a biocontrol alternative for powdery scab, we assessed the effect of eight potential microbial agents belonging to the genera Trichoderma spp., Pseudomonas sp., Bacillus sp. and Streptomyces spp. in the reduction of the disease. Additionally, we evaluated biocarbon, chitin and chitosan, which are organic additives with a biocontrol potential in other pathosystems. Initially, a trial was established to obtain the development of galls in two different locations (Mosquera and Subachoque, Cundinamarca) with two concentrations of protozoan inoculum. Eight weeks after sowing, the disease severity was determined counting the number of galls per plant. Because of the consistent development of the disease, the assays were established in the municipality of Subachoque in potted plants with naturally infested soil (1×103 sporosori/g of soil). All microbial biocontrol agents showed a reduction in gall development (P>0.05). Streptomyces misionensis Ac006 caused the largest reduction in severity (51.41%). Among the organic additives, 0.5% chitosan had the greatest (62.58%) effect on disease reduction, a significant (P≤0.05) effect. Our results suggest possible alternatives for the sustainable management of powdery scab in potato.spa
dc.identifier.doihttp://dx.doi.org/10.17584/rcch.2017v11i2.6150-
dc.rights.creativecommonsAtribución-NoComercial-SinDerivadasspa
dc.subject.armarcPapas (Tubérculos) - Cultivo-
dc.subject.armarcPapas (Tubérculos) - Enfermedades y plagas-
dc.subject.armarcPlagas agrícolas-
dc.subject.armarcAgrosaviaspa
dc.subject.proposalFitopatógeno biotróficospa
dc.subject.proposalProtozoospa
dc.subject.proposalEnfermedadspa
dc.subject.proposalAgallasspa
dc.subject.proposalBiocontroladoresspa
dc.subject.proposalAditivos orgánicosspa
Appears in Collections:Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas

Files in This Item:
File Description SizeFormat 
PPS_1469.pdfArchivo principal421.76 kBAdobe PDFThumbnail
View/Open


This item is licensed under a Creative Commons License Creative Commons